201800. lajstromszámú szabadalom • Eljárás t-PA és SCU-PA termelésének növelésére
HU 201800 B 13 14 VII. TÁBLÁZAT (folyt.) SCU-PA termelése standard ECGF-fel és tisztított ECGF-fel különböző koncentrációknál Tápközeg 8 24 Idő (óra) SCU-PA (ng/üreg) 48 72 4.50 p.g/ml ECGF + 90 jtg/ml hep. 127 279 256 575 5. 50 ng/ml p-ECGF 5,6 80 90 105 6.50 ng/ml p-ECGF + 90 (ig/ml hep. 5,1 305 229 323 7.100 ng/ml p-ECGF-212 244 194 8.100 ng/ml p-ECGF + 90 p.g/ml hep. 36 258 249 541 9.200 jig/ml p-ECGF 11 258 216 238 10.200 pg/ml p-ECGF + 90 (i.g/ml hep. 289 308 730 VIII. TÁBLÁZAT t-PA termelése standard ECGF-fel és tisztított ECGF-fel különböző koncentrációknál Tápközeg 8 12 Idő (óra) 24 t-PA (ng/üreg) 48 72 1. RPMI egyedül 4,1 3,4 4,7 5,0 9,5 2. Hep.* 5,4 6,6 9,4 14,3 14,6 3.50 p.g/ml ECGF 4,9 7,3 27,7 27,4 27,2 4.50 jjLg/ml ECGF + hep. 8,3 15,8 51,1 102,0 149,4 5.200 ng/ml p-ECGF 5,1 8,1 26,7 17,3 13,7 6.200 ng/ml p-ECGF + hep. 6,6 11,4 37,1 76,4 79,6 7.100 ng/ml p-ECGF 5,4 6,5 14,3 12,0 11 8.100 ng/ml p-ECGF + hep. 5,7 9,1 32,6 54 41,2 9.50 ng/ml p-ECGF 4,6 5,6 8,9 7 10 10.50 ng/ml p-ECGF + hep. 5,5 5,9 20,4 25,6 22,6 11.25 ng/ml p-ECGF + hep. 5,4 6,1 13,8 17,7 16,4 13.12,5 ng/ml p-ECGF 3,4 5,1 4,4 5,4 7,7 14.12,5 ng/ml p-ECGF + hep. 4,9 3,3 9,2 14,1 12 * a heparin-koncentráció minden esetben 90 |xg/ml Fibrin autofrágiát, I-fibrinolizist, immunprecipitálást és vizsgálatot fejlesztünk ki és alkalmazunk a t-PA és SCU-PA termelés mérésére mind kvalitativen, mind kvantitativen. Anti-UK IgG-t tisztítunk ammónium-szulfátos kicsapással és DEAE kromatográfiával humán urokináz (Abbokina- 50 se, Abbot Laboratories, Chicago, Illinois) ellen irányuló kecske antiszérumból. Az így készített anti- UK IgG-ről úgy találjuk, hogy kiváló reagens SCUPA immun kicsapásához különböző humán tüdő fibroblaszt tenyészetek felülúszóiból. Ugyanezt az 55 antitestet és egy hasonlóképpen készített nyúl anti- UK IgG-t alkalmazunk SCU-PA méréséhez kettős rétegű (szendvics) ELISA mérésben. Az I-VIII. Táblázatokban fentebb bemutatott adatokat a megfelelő ELISA vizsgálattal határozzuk meg. 60 Ezen kívül a plazminogén aktivátorokhoz (t-PA és SCU-PA) egy kromogénes mérési módszert alkalmazunk mikrotitráló lemezeken való használatra. Ebben a közvetett mérésben plazminogént alakítunk át plazminná t-PA vagy SCU-PA révén. A 65 plazmin viszont elhasítja a szubsztrátumot, a D-valil-L-leucil-L-lizin-p-nitroanilidet, felszabadítva a p-nitroanilin kromofórt, amelyet fotometriásan mérünk 405 nm-nél. Ez a vizsgálati módszer lineáris a 0,125-5,0 nemzetközi egység (IU) tartományban SCU-PA-ra és 0,5-5 ng/ml tartományban t-PA-ra. A t-PA elleni fajlagos semlegesítő antitest hozzáférhetőségével ezt a módszert lehet alkalmazni az egyes enzimek relatív mennyiségének becslésére komplex keverékekben. További bizonyítékokat kapunk, amelyek normál humán diploid tüdő fibroblasztok által végzett SCU-PA és t-PA termelést igazolják, két technika segítségével: fibrin autográfiávalésimmunrecipitációval. Mindkét technika enzimek szétválasztásán alapul SDS-akrilamid gélelektroforézissel. Fibrin autográfia esetében az elektroforézissel elkülönítjük PA-k kimutatását úgy érjük el, hogy az akrilamid gélt felülrétegezzük fibrinagarral. Plazminogén jelenlétében plazminnal előidézett fibrinelbomlás következtében létrejött feltisztulások jelen-8