197352. lajstromszámú szabadalom • Eljárás pHJL 210 plazmid és más, ezzel összefüggő kétfunkciós klónozó vektorok előállítására Streptomycetesben való alkalmazáshoz

24 197352 25 tartalmazó (hogy a végső leme2koncentráció 2 /ul/ml neomicin legyen) agart használunk tiosztreptont tartalmazó agar helyett. Hason­lóképpen a pHJL210 és pHJL211 megalkotását egyenként végezzük, kiválasztjuk és kinyer­jük lényegében a 3. példában lévő kitartás­sal összhangban, azzal a kivétellel, hogy a pHJL210 és pHJL211 plazmidokat alkalmazzuk a pHJL2202 helyett. 9. példa A Streptomyces lividans/pHJL210, S. li­­vidans/pHJL210 és S. lividans/pHJL211 megalkotása A kívánt konstrukciókat egyenként al­kotjuk meg, kiválasztjuk és kinyerjük lénye­gében a 8. példában található kitanitással összhangban, azzal a kivétellel, hogy S. gri­­seofuscus helyett Streptomyces lividans-t al­kalmazunk. A S. livadans régi és jól ismert törzs, amely a köz rendelkezésére áll NRRL B-15 826 letéti számon, amely a Northern Re­gional Research Laboratorynál (Peoria, Illinois) van letétbe helyezve, és annak ré­szét képezi. Ezen kívül a S. lividans növesz­téséhez és protoplasztképzéséhez tartozó tápközeg, a protoplaszt készítése és a transzformáció olyan, amelyet az Internatio­nal Publicationban leírtak, a PCT/BG79/00 095 nemzetközi szabadalmi bejelentésnél, amely­nek közzétételi száma W0679/01 169, a 2. pél­dában. Az azonosított transzformánsokat al­kalmaztuk azután a pHJL201, pHJL210 és pHJL211 plazmidok előállításához és izolálásá­hoz ismert módszerek szerint, lényegében úgy, ahogyan ez a 3 C példa kitanításában le van Írva. 10. példa A Streptomyces fradiae/pHJL201, S. fra­­diae/pHJL210 és S. fradiae/pHJL211 megalkotása A kívánt konstrukciókat egyenként al­kotjuk meg, kiválasztjuk és kinyerjük, lé­nyegében a 8. példában található kitanitás szerint azzal a különbséggel, hogy Strepto­myces fradiae-t alkalmazunk S. griseofuscus helyett. A S. fradíae régi és jól ismert törzs, amely a köz rendelkezésére áll ATCC 19 609 letéti számon, és amely az American Type Culture Collection-nál (12 301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland 20 852) van letét­be helyezve és annak részét képezi. Ezen kívül a TSB tápközeget a S. fradiae növesz­téséhez és protoplaszt-képzéshez módosítjuk olyan formán, hogy csak 0,2% glicint tartal­maz. A S. fradiae nagyon kis gyakorisággal transzformál az endogén restrikciós rendszer miatt, ezért a transzformánsok száma DNS 14 milligrammonként lényegesen kisebb a PHJL201, pHJL210 és pHJL211-el transzfor­máit S. fradiae gazdaszervezeteknél, mint a S. griseofuscus vagy S. lividans gazdaszer­vezeteknél. A S. fradiae-ből izolált plazmid DNS azonban nagy gyakoriságú transzformá­lást ad, amikor ezt visszatranszformáljuk S. fradiae-ba. SZABADALMI IGÉNYPONTOK 1. Eljárás mérsékleten nagy kópiaszámú rekombináns DNS klózozó vektor előállítására azzal jellemezve, hogy a.) a pJLI92 plazmid replikációt tartalmazó restrikciós fragmensé­­nek egy mintegy 2,5 kb-s Kpn I kiindulását és b.) egy vagy több olyan DNS szegmenst, amely legalább egy antibiotikumra ad át re­zisztenciát, amikor érzékeny, restrikció nél­küli gazdasejtre visszük át, egyesítünk. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás PHJL2200 és pHJL2201 plazmidok előállításéra azzal jellemezve, hogy a pHJL192 plazmid mintegy 2,5 kb-s Kpn I restrikciós fragmen­­sét és a pLR2 plazmid végeinél Kpn I kap­csolókkal rendelkező, mintegy 1,6 kb-s BamHI restrikciós fragmensét ligáljuk. 3. Az 1. igénypont szerinti eljárás PHJL2202 és pHJL2203 plazmidok és ezek be­­iktatásos izomerjeínek előállítására azzal jel­lemezve, hogy a pHJL2200 plazmid részleges Bel I emésztésével nyert anyagot és a pLR4 plazmid mintegy 3,4 kb-s BamHI fragmensét ligáljuk. 4. Az 1. igénypont szerinti eljárás a PHJL200, PHJL201, pHJL202, pHJL203, pHJL204 és pHJL205 plazmidok előállítására azzal jel­lemezve, hogy a pJL192 plazmid DNS-t Kpn I restrikciós enzimmel emésztünk, a reakcióke­verékből az emésztés során a 15., 30., 60., 90. és 120, percben alikvotokat veszünk, az egyes alikvot minták DNS fragmenseit ligáz­­zal inkubáljuk az önkörbezárás elősegítésére, az alikvotok mindegyikének egy mintáját baktérium-sejttel inkubáljuk a transzformálás kivitelezésére, a transzformált sejteket feno­­típus alapján kiválasztjuk, a kiválasztott, transzformált sejteket plazmid-méret szerint osztályozzuk, és a mintegy 7,2 kb-s, mintegy 9,9 kb-s, mintegy 18 kb-s, mintegy 15,3 kb­­-s, mintegy 10,6 kb-s és mintegy 12,6 kb-s plazmidokat hagyományos módon izoláljuk és azonosítjuk, amely plazmidokat pHJL200-nak, illetve pHJL201-nek, illetve pHJL202-nek, il­letve pHJL203-nak, illetve pHJLk204-nek, il­letve pHJL205-riek nevezzük el. 5. Az 1. igénypont szerinti eljárás a pHJL210 és pHJL211 plazmidok előállítására, azzal jellemezve, hogy egy E. coli dam-törzs­­ből izolált pLR2 plazmid mintegy 1 kb-s Bel I restrikciós fragmensét és a pHJL201 plazmid részleges BamHI emésztésével kapott anyagot ligáljuk. 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Thumbnails
Contents