194312. lajstromszámú szabadalom • Eljárás új policiklusos éter antibiotikumok és ezeket tartalmazó készítmények előállítására

1 194 312 2 ra minden mikroorganizmust táptalajt tartalmazó kémcsövekben Inokuláltunk és minden mintában más koncentrációjú UK-58,852 antibiotikumot alkalmaz­tunk, hogy a minimális, 24 óra alatt hatásosan inhl­­biáló mcg/ml antibiotikum mennyiséget meghatároz­zuk (MIC). /, táblázat Baktériumellenes aktivitás Mikroorganizmus Törzs száma MIC, mcg/ml UK-58,852 antibiotikum (nátriumsó) Staphylococcus aureus 01A005 3.12 01A052 3.12 01 Al 10 3.12 01A400 6.25 Streptococcus faecalis 02A006 >50 Streptococcus pyogenes 0,20303 0,05 Actinomyces pyogenes Actinobacillus 14D011 < 0.08 pleuropneumoniae 44B004 > 25 Pasteurella múltoddá 59A006 >200 Clostridium perfringens 10A009 0,79 Bacteroides fragilis Fusobacterium 78C024 0.10 necrophorum Treponema 84C004 >25 hyodysenteriae 94A007 0.39 A Gram-ncgatív baktériumokkal, mint például Escherischia coli, Pseudomonas aeruginosa, Kleb­siella pneumoniae, Serratia marcescens és Entero­­bakteriaceae aerogenes, szemben minden egyes eset­ben > 50 MIC értékeket tapasztaltunk. Az UK-58,852 antibiotikum és kationos sói kiváló coccidiosis ellenes hatást fejtenek ld barom­fitenyészetben. Amennyiben 25-150 ppm mennyi­ségben a baromfi táplálékába keverik, hatásosan ki­­küszbölik az Eimeria tenella, E. acervulina, E. maxi­ma, E. brunettí és E. necatrix által okozott fertőzé­seket. Az UK-58,852 antibiotikum és sói coccidiosis elleni hatásosságát csirkék esetében az alábbi eljárással határoztuk meg. 3—5 darab 10 napos, nem fertőzött fehér leghorn fiatal kakast, pépes darakeverékkel etet­tünk, amely egyenletesen elkeverve UK-58,852 anti­biotikumot vagy annak nátrium és/vagy kálium sóját tartalmazta. 24 órás ilyen táplálás után minden csirké­be per os az egyes Eimeria törzsek oocystáit jutat­tuk. Egy másik 3-5 tagú 10 napos csirke csoportot hasonló UK-58,852 antibiotikumot vagy sóját nem tartalmazó tápanyaggal tápláltunk. 24 óra táplálás után ezeket ugyancsak megfertőztük és kontroll­ként alkalmaztuk. További 3-5 tagú 10 napos csir­ke csoportot hasonló UK-58,852 antibiotikumot vagy sóját nem tartalmazó tápanyaggal tápláltunk és ezeket nem fertőztük meg coccidiosist kiváltó mikroorganizmussal. Ezt az állatcsoportot normál kontrollként alkalmaztuk. Az eredményeket az E. acervulina alkalmazása esetében a beadagolás után 5 nappal, más esetben a fertőzés után hat nappal értékeltük ki. A coccidiosis ellenes hatást az E. tenella ese­tében 0-4 értékű skálán kifejezett kóros elváltozás­ban szabtuk meg. (Lásd: J. E. Lynch, „A New Met­hod forn the Primary Evaluation of Anticoccidial Activity , Am. J. Vet. Res., 22, 324-326, 1961), más esetekben ez 0-3 érték (lásd: J. Johnson és W. H. Reid, „Anticoccidial thugs. Lesion Scoring Technique^ in Battery and Floor Pen Experiments in Chicks , Exp. Parasit, 28, 30-36, 1970). Egy arányszámot határoztunk meg a kezelt csoportok és a fertőzött csoportok kóros elváltozás! számának hányadosát képezve. A II. táblázatban foglaltuk össze a vizsgálatok eredményeit. II táblázat In vivo coccidiosis elleni hatás Fertőző mikro­organizmus Dózis (ppm a táp­anyagban) A fertőzés átlagos mértéke Súlygyara­podás (%) Eimeria tenella 150 0.0 0 125 0.0 4 100 0.0 8 75 0.0 28 50 0.0 45 Eimeria 25 0.0 93 acervulina 150 0.0 0 125 0.0 0 100 0.0 23 75 0.0 0 50 0.0 62 25 0.0 98 Az állati táplálék értékét közvetlenül az állatok táplálásával állapítottuk meg. A 1,197,826 számú brit szabadalmi leírás részletesen megadja a kérőd­zők esetében alkalmazandó in vitro vizsgálati mód­szert, amelynek során az állati tápanyag értékének meghatározásával a mikroorganizmusok által a táp­anyagban okozott változásokat könnyebben és megbízhatóan ismételve mérhetjük. A módszer olyan berendezést ír le, amelyben in vitro végez­hetjük és tanulmányozhatjuk az állatok emésztési folyamatát. Igen gondosan ellenőrzött körülmé­nyek között laboratóriumi berendezésbe helyez­zük az állati táplákékot és a bendő inokulumot, valamint a különféle növekedést segítő anyagokat, majd mintákat veszünk és így a tápanyag mikro­organizmusok általi felhasználási folyamatát érté­kelhetjük. A bendő folyadék proplonsav tartalmá­nak növekedése azt jelzi, hogy a növekedést segítő anyag a tápanyag összetételére kívánt hatást fejt ki. A propionsav mennyiség változását a bendő folya­dékban a kontrol] bendő folyadék propionsav tar­talmára vonatkoztatva adjuk meg. Hosszútávú in vivo táplálási kísérleteket alkalmaznak arra a célra, hogy valóban megbízhatóan kimutassák a bendő folya­dék megnövekedett propionsav tartalma és a javult állat-fejlődés közötti összefüggést. Kereskedelmi hizlaláshoz alkalmazott tápanyaggal és szénával etetett elfekélyesedett szarvasmarhá­ból bendő folyadékot vettünk. A bendő folyadékot gézen átszűrtük és 10 ml bendő folyadékot mértünk egy 50 ml-es lombikba, amely 400 mg standard szub­­sztrátot (68% gabonakeményítő ♦ 17% cellulóz ♦ 15% extrahált szójabab), 10 ml 6,8 pH értékű puffert és a vizsgálandó vegyületet tartalmazta. A lombikot körülbelül 2 percig oxigénmentes nitrogénnel mos­tuk át, majd 39°C-os vízfürdőben rázatva, körül­5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 6

Next

/
Thumbnails
Contents