193067. lajstromszámú szabadalom • Eljárás új piridazinon-származékok és sóik előállítására

-klorid felesleget, hogy az elegyet előbb bepárlóban desztilláljuk, majd 20—20 ml benzollal háromszor alkalmazott azeotróp desztillációval a felesleget nyomnyi mennyi­ségre csökkentjük. A maradék a kívánt 4-klór-pirimidin nyersterméke, amelyet tisz­títás nélkül alkalmazhatunk a /B/ lépésben. /B/ A céltermék előállítása. Az ,/A/ lépésben kapott nyers 4-klór-piri­midin teljes mennyiségéhez 10 ml N-metil­­-2-pirrolidont adunk és úgy oldjuk fel, hogy 90°C hőmérsékletre hevítjük. A forró oldathoz adunk előbb 0,7 ml trietil-amint, majd 1,89 g 6-/4-amino-fenil/-4,5-dihidro-3/2H/-piri­­dazinont, s az elegyet további másfél órán át reagáltatjuk 90°C hőmérsékleten. Ezután a reakcióelegyet jeges fürdőn hütjük, hozzá­adunk 100 ml acetont, a kivált szilárd anyagot kiszűrjük és a szilárd szűrletet kétszer mos­suk acetonnal; ezután a szilárd anyagot fel­oldjuk DA4F és víz 2:1 arányú elegyében, az oldatot In nátrium-hidroxidos vizes oldattal semlegesítjük, majd eltávolítjuk az oldószert és a maradékot szilikagéllel kromatograíál­­juk, az anyagot kloroformban feloldva és kloroform és metanol 10:1 arányú elegyével eluálva. A célterméket tartalmazó frakciókat egyesítjük és csökkentett nyomáson bepárol­juk. A maradékot feloldjuk 20 ml DMF és 100 mi aceton elegyében és jeges fürdőn hütjük. Ezután hozzáadunk előbb 1,2 ml 4n hidrogén-kloridos dioxános oldatot, majd 100 ml étert, végül kiszűrjük a kivált szilárd anyagot. A kiszúrt maradékot éterrel mossuk és szárítjuk; így 1,12 g fehér szilárd anyagot kapunk, amely a céltermék mono-hidroklo­­ridja. Olvadáspontja 300°C feletti, IR-spek­­truma 1650 cm-1. 8. példa Farmakológiai és toxikológiai teszt A találmány szerint előállított új pirida­­zinon származékok farmakológiai hatékony­ságát és mérgező hatását az alábbiak szerint vizsgáljuk, szívre ható gyógyszerekben való alkalmazhatóságuk kimutatására. 1. Kutyaszív izoláltan átáramoltatott szemölcsizmának kontrakciójára gyakorolt hatás Endo és Hashimoto módszerével [ismer­teti az American Journal of Physiology, 218, 1459—1463/1970/] preparáljuk kutyaszív szemölcsizmát, hogy izoláltan legyen véráram­ban. A találmány szerint előállított vegyidet hatékonyságát úgy határozzuk meg, hogy a szemölcsizom közelében az artériába befecs­kendezzük az oldószerben oldott hatóanyagot és rögzítjük a szemölcsizom kontrakciójára gyakorolt hatást. A szemölcsizom kontrak­ciójának növekedését a 2. táblázat mutatja. 2. Tengerimalac-szív izolált bal pitvarának kontrakciójára gyakorolt hatás 5 200—300 g testsúlyú hím tengerimalac koponyájára ütést mérünk és gyorsan ki­vesszük a bal pitvart. A mitrális billentyűt szervfürdő íenékfalához erősítjük, amely szervfürdőt 30 ml Krebs-Henseleit oldattal töl­tődünk fel és 35°C hőmérsékleten tartunk. A szervfürdőben lévő Krebs-Henseleit oldaton átbuborékoltatunk egy gázelegyet, amely 95% 02 és 5% C02 gázt tartalmaz. Az izo­­m drikus feszültséget úgy mérjük, hogy a bal pi'var fülcséjéhez /auricula cordis/ cérnával mérőátalakítót kötünk. A szívpitvart 0,5 g nyugalmi terhelésen tartjuk és olyan villa­mos négyszögimpulzusokkal gerjesztjük, amelyek szélessége 1 ms, feszültségszintje a küszöbszint másfélszerese, ismétlési frekven­ciája 2 Hz, dipoláris platina-elektródákon át. A pitvar állapotát a preparálás után 30 percen át stabilizáljuk, majd az oldatban fel­oldott hatóanyagot a szervfürdőhöz öntjük és mérjük a hatást. A bal pitvar kontrak­ciójában mutatkozó növekedést a 2. táblá­zat mutatja. 3. Általános kutyánál a miokardiális kontrakcióra gyakorolt hatás Kevertfajú, 8—15 kg testsúlyú hím és nős­tény kutyákat alkalmazunk. Intravénás injek­cióként beadott, testsűlykilogrammonként 30 mg nátrium-pentobarbitállal altatjuk a kutyát és mesterséges lélegeztetést alkalma­zunk. A negyedik és ötödik borda között meg­nyitjuk a mellkast és átmetsszük a szívbur­kot, szabaddá téve a szívet. Az aorta fél­sz illő ágához elektromágneses véráramlás­­merő szondáját erősítjük és az aortán át­folyó véráramot tekintjük a szívből kilépő véráram /CO/ közelítő'-muíatójának. A bal kamrai nyomást ,/LVP/ Miller-katéter típusú nyomásadóval mérjük és differenciáló áram­körrel meghatározzuk a kapott LVP érték elfő differenciál-hányadosát [dP/dt]. A jobb kamrai izom kontrakcióját /CONT/ a szív­­fa hoz illesztett, mechanikus feszültségre ér­zékeny mérőátalakítóval határozzuk meg. A sz sztémás vérnyomást a bal comb artériájá­nál mérjük. A szívciklust EKG-ból /II. élveze­téi/ és kardiotachiméterrel határozzuk meg. Az oldószerben feloldott hatóanyagot intra­vénásán adjuk be a bal comb vénáján át. A dP/dt derivált csúcsértékeit [dP/dtm], valamint a CONT és a CO növekedésének mí rtékét a 2. táblázat mutatja. 4. Akut toxicitás meghatározása Az akut toxicitást /LD50/ hím egereken határozzuk meg intravénás és orális beadás esetére a Richfield és Wilcoxon által aján­lott módszerrel [ismerteti a Journal of Phar­macology and Experimental Therapeutics, 96, 99*113/1949/]. Az eredményeket a 2. táblázat mutatja. 6 193067 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 4

Next

/
Thumbnails
Contents