191858. lajstromszámú szabadalom • Eljárás stabil plurilamelláris vesiculumok előállítására

1 191 858 2 got kapszulázunk. MLVs esetén a beépített vizes fázis mennyisége a 10%-ot nem haladja meg. Az amfipatikus lipidek túlnyomó többsége ké­pezheti az SPLVs összetevőit. Alkalmas hidro­filcsoportok lehetnek egyebek között a foszfát, a karboxil, a szulfát és az aminocsoportok. Al­kalmas hidrofób csoportok lehetnek egyebek között, de nem kizárólag a telített és telítetlen alifás szénhidrogéncsoportok, ahol az alifás cso­portok legalább egy aromás és/vagy cikloalifás csoporttal lehetnek szubsztituálva. Az előnyösen alkalmazható amfipatikus vegyületek a foszfoli­­pidek, és az azokkal szorosan azonos kémiai szerkezetű molekulák. Ilyen molekulák egyebek között a lecitin,a foszfatidiletanolamin, a lizole­­citin, a lizofatidiletanolamin, a foszfátidilszerin, a foszfatidilinozitol, a sfingomielin, a kardioli­­pin, a foszfátidinsav és a cerebrozidok. Az SPLVs előállítására alkalmazható lipidek egye­bek között a foszfolipidek, közöttük a termé­szetes lecitinek, (tojás lecitin vagy szójabab lecitin) és a szintetikus lecitinek, így a telített szintetikus lecitinek (például dimirisztoilfoszfá­­tidilkolin, vagy dipalmitoil-foszfatidilkolin vagy disztearoilfoszfatidilkolin) és a telítetlen szinte­tikus lecitinek (például dioloil-foszfatidilkolin vagy dilinoloilfoszfatidilkolin). Az SPLV kettős­rétegek valamely szteroid komponenst, így ko­­leszterolt, komprosztannolt, kolesztanolt, ko­­lesztánt és hasonló vegyületeket tartalmazhat­nak. Savas hidrofilcsoporttal rendelkező vegyü­letek (foszfátcsoport, szulfát csoport, stb.) al­kalmazása esetén a kapott SPLV anionos lesz; bázisuk csoportok így aminocsoportok felhasz­nálásával kationos liposzómákat kapunk; polieti­­lénoxi vagy glikolcsoportok felhasználása neutrá­lis liposzómákat eredményez. Az SPLV mérete széles határok között változik. Ez a tartomány 500 nm és 10 000 nm között, általában 1000— 4000 nm között van. Számos biológiailag aktív vegyület SPLV-be építhető (a beépítés alatt a vizes részbe vagy a membrán kettősrétegbe történő bejuttatást ért­jük). Ilyen vegyületek egyebek között a nuklein­­savak, a polinukleotidok, antibakteriális vegyüle­tek, antivirális vegyületek, antifungális szerek, parazitaellenes vegyületek, tumorgátló vegyüle­tek, fehérjék, toxinok, enzimek, hormonok, ne­uro transzmitterek, glukoproteinek, immunoglo­­bulinok, immunomodulátorok, színezékek, radio­­nyomjelzők, radio-opaque vegyületek, fluores­­cens anyagok, poliszacharidok, sejtjei receptor kötő molekulák, antiinflammatoriumok, glau­­koma kezelésére alkalmas szerek, midriatikus vegyületek, helyi érzéstelenítők, stb. Az SPLV-t például az alábbiak szerint állíthat­juk elő: 50 mikromól foszfolipidet 5 mikro­­gramm BHT-t (butilezett hídroxitoluol) tartal­mazó 5 ml térfogatú dietil-éterhez adunk, majd 0,3 ml térfogatú a kapszulázandó biológiailag ak­tív anyagot tartalmazó vizes fázist adagoljuk. A kapott oldatot, mely a beépített hatóanyagot és a beépített lipidet tartalmazza az oldószer túl­nyomó többségének eltávolítása céljából inert gázzal átmossuk, ultrahanggal kezeljük. Ily mó­don eljárva a BHT-nek a vesiculomokban törté­nő beépülése miatt stabil SPLV-t kapunk. Az Eur. J. Biochem. 121:475-482 1982 (Lenk és munkatársai) irodalmi hely antitestek 5 liposzóma kapszulázásáról számol be ultrahan­gos kezelés és bepárlás útján, a bepárlást oly mó­don végezve, hogy az oldószert koleszterolt és foszfatidilkolint tartalmazó kloroform/éter és vizes fázis rendszerről távolítják el, de nem rész- 10 létezi a vizes fázisban visszamaradt lipid meny­­nyiségét. Az SPLV határozottan eltér tulajdonságaiban más liposzómáktól, melyek egy vagy több lamel­lát tartalmaznak (például SUV és RÉV). Frakci- 15 on ált kifagyasztásos elektromikroszkópos vizsgá­latok mutatják, hogy az SPLV készítmények lé­nyegében teljesen mentesek SUV-től, REV-től, azaz a vésiculomoknak 20%-nál kisebb része uni­­lamelláris. Ezek a szerkezetek azonban elektro- 20 mikroszkópos technikával az MLV-től nem kü­lönböztethetők meg, bár számos fizikai tulajdon­ságukban eltérnek. Az alábbiakban részletesen összevetjük az SPLV és MLV közötti különbsé­geket. 25 Az SPLV tárolási stabilitása A lipid vesiculum stabilitása azt mutatja, hogy egy hosszabb időtartam alatt a vesiculum zárt 30 ürege mennyire képes elkülönülni a külső kör­nyezettől. Valamely lipid vesiculum akkor használható fel kiválóan, ha a tárolás során sta­bilnak bizonyul. Az alkalmazás szempontjából azonban az is igen fontos tényező, hogy a fel- 35 használás során a vesiculum milyen lassan adja le a belső tartalmát. Más alkalmazási szempon­tok szerint igen lényeges, hogy az adagolás után, amíg a hatási területet el nem érte, a vesuculum intakt maradjon. Kísérleteink azt mutatják, hogy 40 ezeknek a követelményeknek az SPLV megfelel, az MLV azonban nem. A vesiculumok bomlását két tényező okozza. Az egyik ilyen tényező a lipidek auto-oxidációja, melynek során azok szénhidrogén láncai peroxi- 45 dókat képeznek, melyek a kettősréteget insta­billá teszik. Ez az oxidáció antioxidánsok, így butilezett-hidroxi-toluol (BHT) adagolásával azonnal megszüntethető. A vesiculumok bomlá­sát okozhatja a környezetből valamely olyan 50 szer , mely a lipidek kettősréteg szerkezetét meg­bontja, ugyanakkor a membránon pórust fejleszt ki. A lipid vesiculum készítmények kezdetben fe­hér színűek. Auto-oxidáció hatására a készít- 55 mény elszíneződik (barnul). Az MLV és SPLV készítményeket összehasonlítva azt tapasztaljuk, hogy bár előállításuk során ugyanazokat a lipid és vizes komponenseket használjuk, az MLV egy­két héten belül elszíneződik, míg az SPLV leg- 60 alább két hónapon keresztül fehér színű marad. Ezeket a megfigyeléseket vékonyréteg kromatog­ráfiás vizsgálatok is alátámasztják, melyek azt jelzik, hogy a lipid bomlástermékek nem az SPLV-ből, hanem az MLV-ből származnak. 65 Abban az esetben, ha mindkét készítményt 5

Next

/
Thumbnails
Contents