184736. lajstromszámú szabadalom • Eljárás dagantellenes hatású immunglobulin-származékok előállítására

1 2 A fenti módszer szerint a reakció igen mérsékelt körülmények között simán lezajlik, és igen nagytisz­taságú hibridet kapunk. A módszer lehetővé teszi a Fab és A fragmentumokból felépülő hibrid szelektív kialakítását, szemben a Fab fragmentumok egymás­hoz kapcsolódásából, illetve az A fragmentumok egy­máshoz kapcsolódásából kialakult hibridekkel, ame­lyeket diszulfid kötések kapcsolnak össze. (2) Egy másik módszer szerint egy legalább egy tiol-gyököt tartalmazó Fab fragmentumot egy lega­lább egy tiol-gyököt tartalmazó A fragmentummal kapcsolunk össze, bármely korábban ismertetett (III) vagy (IV) általános képletű térhálósító reagens segít­ségével. A reagáltatást úgy végezhetjük, hogy három Fab fragmentumot, a térhálósító szert és az A fragmentu­mot egyidejűleg érintkezésbe hozzuk egymással, elő­nyösen azonban úgy állítjuk elő a protein- hibridet, hogy az A fragmentumot a Fab-fragmentum és a tér­hálósító reagens megelőző reakciójának termékével reagáltatjuk. Úgy is eljárhatunk, hogy a Fab fragmen­tumot az A fragmentum és a tárhálósító szert reak­ciójának termékével reagáltatjuk. Az első esetben elő­nyösen 0,8-6 mól térhálósító reagenst, illetve A frag­mentumot használunk 1 mól Fab fragmentumra. Az utóbbi esetben előnyösen 0,8-3 mól térhálósító szert és 0,2-3 mól Fab fragmentumot használunk 1 mól A fragmentumra. A reagáltatást 0 és 60 °C hő­mérsékletei. kezdjük. A térhálósító reagenst keverés közben, kis mennyiségű oldószerben, például N,N-di­­metil-formamidban, dimetil-szulfoxidban, 1,2-dimet­­oxi-etánban, metanolban, etanolban, acetonban fel­oldva adagoljuk a Fab fragmentum oldatához. A pufferelés 6-10-re történik. A protein koncentráció előnyösen 0,5-100 mg/ml, vagy még előnyösebben 1-20 mg/ml. A térhálósítószer feleslege például dia­lízissel, oszlop kromatográfiában vagy molekulaszi­tával távolítható el. Ezután egy másik fragmentum oldatot 6-10-re pufferelünk (a protein koncentráció előnyösen a fent megadott), és ennek segítségével 0-60 °C-on folytatjuk a reagáltatást. A kapott pro­tein hibrid elkülönítése a reagkcióelegyből és tisztí­tása szokásos módszerekkel, például oszlop kromatog­ráfiásan vagy molekulaszitával történhet. (3) további lehetőség, hogy egy legalább egy tiol­­-gyököt tartalmazó tumorellenes immunoglobulin Fab fragmentumát és egy legalább egy tiol-gyököt tartalmazó diftéria toxin A fragmentumát együttesen oxidáljuk úgy, hogy diszulfid kötéssel kössük össze őket. Az oxidálást végezhetjük a levegő oxigénjével vagy o-jód-benzoesavval vagy o-fenantrolinnal és réz­­f'/ulláttal, (4) úgy is eljárhatunk, hogy akár Fab, akár az A fragmentumot először az 5,5 -ditio-bisz(2-nitro-ben­­zocsavval) (Ellman reagens), 2,2 -dipiridil-diszulfid­­dal. 4,4-dipiridil-diszulfiddal vagy tetrationáttal rea­gáltatjuk, és a kapott reakcióterméket reagáltatjuk a másik (A vagy Fab) fragmentummal. Különösen előnyösek az (1) és (2) eljárások. A találmány szerint előállított tumorellenes pro­tein hibrid egyik molekularésze lényegében az A frag­mentumnak felel meg. amely toxikus a daganatsej­tekkel szemben míg másik molekularésze lényegében Fab fragmentummal azonos, amely specifikusan felis­meri a daganatsejteket éí Olyan speciális hordozóként működik, amely az A fragmentumot a daganatsej­tekben irányítja és lehetővé teszi az A fragmentum behatolását a sejtekbe. E tulajdonságok összessége folytán a találmány szerint előállított protein hibrid kiváló jellemzőkkel rendelkezik. Ezek a következők: 1) Miután a találmány szerinti hibrid nem tartal­mazza az immunoglobulin Fc részét, elkerülhető az Fc részen keresztül történő kötődés sejtmembránban található Fc receptorokhoz és ennek következtében lehetővé válik az ellenanyaghatás szelektív érvényesí­tése. 2) Ismert, hogy ha egy xenogén immunoglobulint használunk, az Fc rész mutatja a legerősebb antigén hatást. A találmány szerinti hibrid esetében, miután nem tartalmaz Fc részt, a xenogén immunoglobulin antigén hatása jelentősen csökken. 3) Ismert, hogy a diftéria toxinnak a B fragmentu­ma képes a sejtek (normál és daganatsejtek) recepto­raihoz kapcsolódni, és az A fragmentum, a B fragmen­tum kapcsolódása révén juthat el a sejthártyába, és csak így fejheti ki citotoxicitását. Miután a találmány szerinti protein hibrid nem tartalmazza a B fragmen­tumot, nem fejt ki citotoxikus hatás az egészséges sej­tekre. Ezen kívül, miután nincs jelen a B fragmentum, a diftéria toxinhoz hasonlítva az antigén hatás is csök­ken. 4) a találmány szerinti hibrid egy lényegében a Fab fragmentumnak megfelelő molekularészt tartalmaz, amelyet egy tumorellenes immunoglobulinból állít­hatunk elő, ez a molekularész pedig specifikusan fel­ismeri a daganatsejteket, és ezáltal lehetővé teszi, hogy az A molekularész kizárólag a daganatsejtekre hasson. Az így sepcifikusan ható A fragmentum igen nagyfokú citotoxicitást mutat a daganatsejtekkel szemben. Találmányunk további részleteit a következő pél­dákkal szemléltetjük. A példákban hivatkozott két mérést, nevezetesen az EF-2-re gyakorolt ADP-ri­­bóz-transzferáz aktivitás mérését, illetve a Fab’ frag­mentum koncentrációjának meghatározását egyszeri gyök immunodiffúziós módszerrel a következőkép­pen hajtottuk végre. Az EF-2-re gykorolt ADP-ribóz-transzferáz aktivi­tás Az EF-2-t patkány máj homogenizátumból külö­nítettük el, és centrifugálással (12000 g, felülúszó frakció 20 perc után), ammónium-szulfát frakcioná­­lással (40%-os telítettségű felülúszó és 60%-os telített­ségű csapadék) és DEAE Sephadex oszlopon végzett kromatografálással (10 mmólos TRIS HCl és 50 mmól kálium-klorid elegyével és 2 merkapto-etanol 1 mólos oldatával kiegyenlítve /pH = 7,6/) részlegesen tisztítva használtuk fel. 0,5 mól TRIS HCl, 20 mmól ditio-treitol (képlete: HSCH2(CHOH)jCH2SH) és 2 mmól etilén-diamin­­•tetraecetsav 0,1 mólos vizes oldatához (pH = 7,6) 80 omol EF-2-t, 45 mmól 14C- izotóppal jelzett NAD'-t (6550 cpm) és 30 fA vizsgálati mintát (ame­lyet úgy készítettünk, hogy az oszlopkromatografálás­­sal kapott frakciók mindegyikét 10—100-szorosra hígítottuk) adtunk, és az elegyet 10 percen át 37 °C- on tartottuk. Közvetlenül a reagáltatás befejezése után 0,5 ml 5%-os triklór-ecetsavat adtunk a reakció­­elegyhez jégfürdőn végzett hűtés közben, és a kivált csapadékot/savban oldhatatlan/összegyűjtöttük egy 0,45 /r-os Millipore szűrőn. Az így kapott csapadék (savban oldhatatlan) radioaktivitását folyadék szcin-184.736 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 5

Next

/
Thumbnails
Contents