Hidrológiai Közlöny 2007 (87. évfolyam)

6. szám - XLVIII. Hidrobiológus Napok: Európai elvárások és a hazai hidrobiológia Tihany, 2006. október 4–6.

60 HIDROLÓGIAI KÖZLÖNY 2007. 87. ÉVF. 6. SZ. Jellemző a y-proteobaktériumok jelenléte, melyek szin­tén kemoorganotróf szervezetek. Természetes környezetek­ből könnyen izolálhatok (víz, talaj, növényi felszinek), né­hány közülük opportunista patogénként ismert. A ß-proteo­baktériumokhoz hasonlóan képesek aromás vegyületek de­gradációjára. Csekély számban fellelhetők az a-proteobaktériumok képviselői is, melyek bizonyos képviselői szintén képesek lehetnek nehezen degradálható szubsztrátok bontására. A frissen vásárolt műgyanta esetében a legelső ioncse­rélt vízben a Bacillus nemzetség képviselője is kimutatható (feltehetően porszennyezéssel kerül a rendszerbe). A tenyésztéses eredményeink egyeznek Sarró és mts. (2005) tapasztalataival: az általuk vizsgált hűtővízben ta­lálható baktériumok az a-, ß-, y-proteobaktériumok cso­portjába, valamint a Bacillus nemzetségbe tartoztak. A Ba­cillus nemzetség - különösen a Bacillus cereus - is gamma­sugárzás rezisztens (1 kGy), sőt a Stenotrophomonas nem­zetség is képes 2,5 kGy y-sugárzásnak ellenállni (Frede­rickson és mts., 2004). Oligotróf környezetekben (pl. atomerőművek vízellátó rendszerei) a mikroorganizmusok táplálékául szolgáló szerves anyagok származhatnak magáról az ioncserélőkről, a bevonatul szolgáló gumi és műgyanta (epoxi) felületek­ről. A víztisztítás során a vízben maradhatnak humin anya­gok és az autotróf mikroorganizmusok szaporodása, anyag­cseréje révén kialakult belső terhelés sem elhanyagolható szempont. A fent említett mikrobák a korróziós folyamatokat befo­lyásolhatják: a biofilmeket alkotó mikróbaközösség össze­tételét pl. a H 2-metabolizmus, valamint egyéb anyagcsere­termékek révén alakíthatják. 3. Tenyésztéstől független vizsgálatok - T-RFLP A tenyésztéstől független vizsgálatok eredményét a TRF -ek területarányai alapján készült főkomponens analízis (PCA) szemlélteti (3. ábra). g -5 ki -20 -25 •30 -35 -40 -45 -20 -10 0 10 20 30 40 PCI 29% 3. ábra TRF-ek területarányai alapján végzett főkompo­nens analízis (PCA) Megfigyelhető a vízminták és a biofilm minták első fő­komponens szerinti szétválása és mintánkénti együtt cso­portosulása. A második főkomponens mentén az EK minta élesen elválik a többitől, az elfolyó biofilm minták pedig mindkét főkomponens mentén szétválnak. A vízminták - Ú és R - TRF profilja diverz, bár egymás­hoz hasonló, eltérést a vízminták között elsősorban a TRF­ek arányaiban (görbe alatti terület) lehetett látni. A regene­rált gyantáról származó víz esetén kisebb csúcsok voltak megfigyelhetők, ami kisebb csíraszámban jelen lévő mik­robára utal. A biofilm minták esetében megállapítható, hogy bár a minták profilja között voltak átfedő csúcsok, a termék (EK, EG) és a tápvízcső (BF, BB) bevonat mintái egymástól el­térő profilt, ugyanakkor páronkénti hasonlóságot mutattak. A termékcső minták közül a már említett nyálkás bevonat (EK) T-RFLP profilja mutatkozott a legváltozatosabbnak. Itt a mikrobák viszonylag védett, áramlási holttérben tud­tak biofilmet képezni, komplex mikrobiális közösséget kia­lakítani. A „barna" és „fekete" gumibevonattal rendelkező befolyó csöveken kialakult biofilmek T-RFLP mintázatait összehasonlítva megállapítható, hogy a hasonlóság ellenére a „barna gumin" diverzebb mikroba társulás tudott kiala­kulni. A T-RFLP mintázatok PAT analízise a tenyésztéshez hasonlóan a ß-protcobaktcriumok dominanciáját valószí­nűsíti. Ezen kívül számos egyéb baktérium (a- proteobak­tériumok, egyéb nem tenyészthető Gram-negatív szerveze­tek) jelenlétét is detektálni tudtuk. A biofilm mintában cia­nobaktériumok jelenléte is valószínűsíthető, jelenlétüket más ultra tiszta vizekből is kimutatták (Chen et al., 2004). Köszönetnyilvánítás A kutatás az ELTE-KKKK (Környezettudományi Koope­rációs Kutató Központ) keretén belül valósulhatott meg. Irodalom Chen, C-L., Liu, W-T., Chong, M-L.. Wong, M-T., Ong, S. L„ Sean, H., Ng, W. J. 2004. Community structure of microbial biofilms as­sociated with membrane-based water purification processes as re­vealed using a polyphasic approach. Appl. Microbiol. Biotechnol., 63, 466-473. Embley, T. M„ Wait, R. 1994. Structural lipids of eubacteria. In: Goodfellow, M., O'Donnell A. G. (eds). Chemical methods in pro­karyotic systematics. J. Wiley and Sons, New York, 121-163. Frederickson, J. K., J. M. Zacchara. D-. L. Batkwill, D. Kennedy, S­M. W. Li, H. M. Konstandharithes, M. J. Daly, M. F. Romine, F. J. Brockman. 2004. Geomicrobiology of high- level nuclear waste-con­taminated vadose sediments at the Hanford site, Washington State. Appl. Enn. Microbiol. 70., 4230-4241. Gu, J-D.. Mitchell, R. 2001. Biodeterioration. In: Dworkin, M et al. (eds.). The Prokaryotes: An evolving electronic resource for the Microbial Community 3rd. edition, release 3.7. http:// 141.150. 157.117:8080/prokPUB/index.htm Kent, A.. D„ Smith, D. J., Benson, B. J., Triplett, E. W. 2003. Web­based phylogenetic assignment tool for analysis of terminal restric­tion fragment length polymorphism profiles of microbial commu­nities. Appl. Environ. Microbiol., 69, 6768-6776. Kulakov, L. A., McAlister, M. B., Ogden, K. L„ Larkin, M. J., O Han­Ion, J. F. 2002. Analysis of bacteria contaminating ultrapure water in industrial systems. Appl. Environ. Microbiol., 68, 1548-1555. Makk, J., Acs, E. 1996. Interaction between diatoms and bacteria in the biofilm of the Danube river. 31. Arbeitstagung der IAD, Baja Ungarn, IAD Wien, 109-114. Penna, V. T. C, Martins, S. A. M„ Mazzola, P. G. 2002. Identification of bacteria in drinking and purified water during the monitoring of a typical water purification system. BMC Public Health, 2. Podani, J. 2001. SYN-TAX 2000 computer programs for data analy­sis in ecology and systematics. User's Manual. Rao, T. S„ Nair, K. V. K. 1998. Microbiologically influenced stress corrosion cracking failure of admiralty brass condenser tubes in a nuclear power plant cooled by freshwater. Corrosion Science, 40, 1821-1836. Reasoner, D. J., Geldreich, E. E. 1985. A new medium for the enume­ration and subculture of bacteria from potable water. Appl. Environ. Microbiol., 49, 1-7. Sarró, M. I., Garcia, A. M., Moreno, D. A. 2005. Biofilm formation in spent nuclear fuel pools and bioremediation of radioactive water. Int. Microbiol., 8., 223-230. Stevenson, B. S„ Eichorst, S. A., Wertz, J. T„ Schmidt, T. M, Brez­nak, J. A. 2004. New strategies for cultivation and detection of pre­viously uncultured microbes. Appl. Env. Microbiol., 70, 4748755.

Next

/
Thumbnails
Contents