Fogorvosi szemle, 2017 (110. évfolyam, 1-4. szám)
2017-03-01 / 1. szám
10 FOGORVOSI SZEMLE ■ 110. évf. 1. sz. 2017. 2. ábra: Maximális kitépési erő mérése. A: Maximum kitépésierő-mérést végző biomechanikai extrakciós egység, speciális fejlesztés a mini implantátumok kimozdítási erejének mérésére (TENZI Kft., Magyarország), B: extrakciós rés és befogó egység, C: szekcionált patkány farokcsigolya 3. ábra: Humán DPSC sejtek in vitro vizsgálata fázis-kontraszt mikroszkóp segítségével. A-D: a sejtek morfológiája nem változik a passzázsszámmal morfológiájának vizsgálata fázis-kontraszt mikroszkóp segítségével a passzázsszám növekedése folyamán (3, 7, 11 és 19 passzázs). A tenyészetek tápcseréje hetente kétszer történt, heti egyszer történt passzázs. A sejtek egészséges, fibroblaszt-szerű morfológiát mutatnak, ami a passzázsszám emelésével sem változik. P = passzázs. OD inszert: Az oszteogén differenciáló médiumban 21 nap után fekete szemcsézettség formájában kalcium depozitok jelennek meg, ami oszteogén aktivitásra utal. K inszert: A kontrollcsoportban ilyen mineralizációs gócok nem láthatók. Eredmények In vitro vizsgálatok Az emberi bölcsességfogakból származó DPSC sejtek az izolálást követően várakozásainknak megfelelően 24 órán belül letapadtak a tenyésztőedény felületére, majd osztódásnak indultak. Ezek a primer sejtkultúrák 10 napon belül T25-ÖS tenyésztőflaskában elérték a konfluens állapotot. Ezt követően hetente passzálva a sejteket a 19. passzázsig jutottunk el, anélkül, hogy a sejtek morfológiája vagy proliferációs képessége megváltozott volna (3. ábra), mindvégig fibroblaszt-szerű morfológiát mutattak. Oszteogén differenciáló médiumban 21 nap inkubáció után jól megfigyelhető fekete szemcsézettség formájában calcium depozitok jelentek meg (OD inszert), ami oszteogén aktivitásra utal. A hasonló módon tartott, de oszteogén indukciós faktorokat nem tartalmazó kontrollcsoportban ilyen mineralizációs gócok nem láthatók (K inszert) (3. ábra). Hasonló eredményeket kaptunk mind a sejtmorfológia, mind a differenciálódási potenciál esetében patkány pulpális sejteken is. Az in vivo implantációs kísérleteinkhez alacsony paszszázsszámú (P2) tenyészetekből származó DPSC sejteket használtunk fel. Osszeointegrációs megfigyelések Osszeointegrációs vizsgálataink azt mutatják, hogy a sejtekkel nem kezelt esetekben a kitépési erővel jelzett rögzülés jelentős értékeket ért el, akár normál tápoldatot (41,1 ± 5,69 N), akár in vitro körülmények oszteogén differenciálódást előidéző médiumot (46,9 ± 7,68 N) juttatunk a farokcsigolyán kialakított üregbe az implantátum behelyezése előtt, csakúgy, mint a kis számú
